一、实验目的1.了解植物组织中叶绿素的分布和性质。2、掌握测定叶绿素含量的原理和方法。二、实验原理叶绿素广泛存在于水果、蔬菜等绿色植物组织中,与植物细胞中的蛋白质结合形成叶绿体。当植物细胞死亡时,叶绿素就会释放出来。游离叶绿素非常不稳定,对光和热敏感。在酸性条件下,叶绿素形成绿褐色脱镁叶绿素,在稀碱液中可水解成鲜绿色的叶绿素。酸式盐以及植醇和甲醇。高等植物中的叶绿素有两种:叶绿素a和b,均易溶于乙醇、丙酮和氯仿。叶绿素含量的测定方法很多,主要有: 1、原子吸收光谱法:通过测定镁的含量,进而间接计算出叶绿素的含量。 2、分光光度法:用分光光度计测量叶绿素提取物在最大吸收波长处的吸光度值,然后可以利用朗伯-比尔定律计算提取物中各色素的含量。叶绿素a和叶绿素b在645nm和663nm处有最大吸收,两条吸收曲线在652nm处相交。因此,分别测定了提取物在645nm、663nm和652nm波长处的吸光度值,可根据经验公式分别计算出叶绿素a、叶绿素b和总叶绿素的含量。三、仪器、原材料和试剂仪器仪器分光光度计、电子顶装天平(灵敏度0.01g)、研钵、棕色容量瓶、小漏斗、定量滤纸、吸水纸、擦拭纸、滴管。原料 新鲜(或干燥)植物叶试剂 1. 96% 乙醇(或 80% 丙酮) 2. 石英砂 3. 碳酸钙粉。四、操作步骤取新鲜的植物叶子(或其他绿色组织)或干燥的材料,擦去组织表面的污垢,去除中脉,切块。称取2g新鲜切碎的样品,放入研钵中,加入少量石英砂、碳酸钙粉和3mL 95%乙醇,研磨成均质浆液,加入10mL乙醇,继续研磨至组织变白.静置 3 到 5 分钟。取1张滤纸放入漏斗中,用乙醇润湿,沿玻璃棒倒出提取液。倒入漏斗中,滤液流入100mL棕色容量瓶中;用少量乙醇冲洗研钵、杵和残渣数次,最后与残渣一起倒入漏斗中。用滴管吸去乙醇,将滤纸上的叶绿体色素全部洗入容量瓶中。直到滤纸和残渣没有绿色为止。最后,用乙醇定容至 100 mL,摇匀。取叶绿体色素提取物,在665nm、645nm和652nm波长处测定吸光度,以95%乙醇作为空白对照。5、计算根据实验原理中提供的经验公式,分别计算植物材料中叶绿素a、b和总叶绿素的含量。
提取叶绿素提取的准备工作在室温为 25°C 的半暗室中进行。提取步骤如下:(1)取1000克新鲜绿叶,放入韦伯斯特搅拌机中粉碎。(2)将1000克压碎的绿叶提取到加入少量碳酸钙的丙酮(温度20℃)中,直至过滤和洗涤的叶碎片无色。
原则叶绿素广泛存在于水果、蔬菜等绿色植物组织中,在植物细胞中与蛋白质结合形成叶绿体。植物细胞死亡时,叶绿素是游离的,游离的叶绿素很不稳定,对光热敏感;在酸性条件下,叶绿素产生绿褐色的脱镁叶绿素,脱镁叶绿素在稀酸碱液中水解成亮绿色的叶绿素以及叶绿醇和甲醇。高等植物中的叶绿素有两种:叶绿素a和b,均易溶于乙醇、乙醚、丙酮和氯仿。
叶绿素是植物光合作用的重要参与者。叶绿素的变化也反映了植物养分的丰富程度,或者是否受到外界的干扰。事实上,这在农业中得到了很好的应用。研究人员经常对作物进行营养诊断,试图通过研究作物叶绿素打开提高作物质量和产量的大门。
叶绿素是植物光合作用中重要的光合色素,可分为a、b、c、d四类。叶绿素不溶于水,但溶于有机溶剂,如乙醇、丙酮、氯仿等;叶绿素不是很稳定,会被光、酸、碱、氧气、氧化剂等分解;叶绿素a的分子式C55H72O5N4Mg,在酸性条件下,叶绿素a分子容易失去卟啉环中的镁而成为脱镁叶绿素;叶绿素a存在于所有浮游植物中,约占有机干重的1%~2%。
叶绿素是植物光合作用中重要的光合色素。叶绿素有四种常见类型 a、b、c 和 d。其中,叶绿素a是唯一能将光合作用的光能传递给化学反应体系的色素。 c、d等吸收的光能全部通过叶绿素a传递到化学反应体系。通过测量叶绿素a,可以掌握水体的初级生产力,了解河流、湖泊和海洋中浮游植物的存在量。实验表明,当叶绿素a的质量浓度上升到10 mg/m3以上并有快速上升的趋势时,可以预测水体将发生富营养化。
叶绿素是植物光合作用中重要的光合色素,可分为a、b、c、d四类。叶绿素不溶于水,但溶于有机溶剂,如乙醇、丙酮、乙醚、氯仿等;叶绿素不是很稳定,会被光、酸、碱、氧气、氧化剂等分解;叶绿素a分子式为C55H72O5N4Mg,在酸性条件下,叶绿素a分子容易失去卟啉环中的镁而成为脱镁叶绿素。